Japonská rýžová ryba

Tento článek popisuje rychlý protokol pro gonadetomizaci a odběr krve u malých teleostů pomocí japonské medaky.(Oryzias latipes)jako model pro studium role pohlavních steroidů ve fyziologii zvířat.

Abstraktní

Gonadální pohlavní steroidy hrají důležitou roli v plasticitě tkání mozku a hypofýzy a v neuroendokrinní kontrole reprodukce u všech obratlovců tím, že poskytují zpětnou vazbu mozku a hypofýze. Ryby Teleost mají vyšší stupeň plasticity tkáně a variace v reprodukčních strategiích než savci a zdají se být užitečnými modely pro studium role pohlavních steroidů a mechanismů, kterými působí. Odstranění hlavního zdroje produkce pohlavních steroidů pomocí gonadektomie spojené s odběrem vzorků krve pro měření steroidů bylo dobře zavedeno a je docela proveditelné u větších ryb a je to účinná metoda pro zkoumání role a účinků pohlavních steroidů. Tyto metody však způsobují problémy při implementaci do malých modelů teleost. Zde popisujeme postupné postupy pro gonadektomii u samců i samic japonských medaků s následným odběrem krve. Ukázalo se, že tyto protokoly jsou u medaky vysoce proveditelné, o čemž svědčí vysoké přežití, bezpečnost z hlediska délky života ryb a fenotypu a reprodukovatelnost z hlediska clearance pohlavních steroidů. Použití těchto postupů v kombinaci s dalšími výhodami použití tohoto malého teleost modelu výrazně zlepší pochopení mechanismů zpětné vazby v neuroendokrinní kontrole reprodukce a plasticity tkání zprostředkované pohlavními steroidy u obratlovců.

Úvod

U obratlovců hrají pohlavní steroidy, které jsou produkovány hlavně gonádami, důležitou roli v regulaci osy mozek-hypofýza-gonáda (BPG) prostřednictvím různých mechanismů zpětné vazby 1, 2, 3, 4, 5. Kromě toho pohlavní steroidy ovlivňují proliferaci a aktivitu neuronů v mozku 6, 7, 8, endokrinní a endokrinní buňky, včetně endokrinní žlázy9 rozhodující roli v plasticitě mozku a hypofýzy. Navzdory relativně dobrým znalostem u savců není regulace osy BPG zprostředkovaná pohlavními steroidy u jiných než savčích druhů zdaleka pochopena, což má za následek špatné pochopení evolučně konzervovaných principů 10. Stále existují omezené studie dokumentující roli pohlavních steroidů v plasticitě mozku a hypofýzy, což vyvolává potřebu dalšího výzkumu role a účinků pohlavních steroidů u různých druhů pohlavních steroidů.

Mezi obratlovci se teleostové stali mocnými modelovými zvířaty pro četné biologické a fyziologické otázky, včetně reakce na stres 12, 13, růstu 14, 15, fyziologie výživy 16, 17 a rozmnožování 2. Teleosty, ve kterých jsou pohlavní steroidy zastoupeny hlavně estradiolem (E2) u samic a 11-keto-testosteronem, dlouholetým testosteronem (11-testosteron) byl spolehlivý18 obecný princip reprodukce mezi druhy. Teleosty vykazují jedinečnost ve svých hypotalamo-hypofyzárních spojeních 19, 20 a odlišných gonadotropních buňkách 21, které jsou někdy užitečné pro objasnění regulačních mechanismů. Navíc díky své vhodnosti pro laboratorní i polní experimenty nabízejí teleosty oproti jiným organismům mnoho výhod. Jsou relativně levné na nákup a údržbu 22, 23. Zejména malé modely teleost, jako jsou rybydanio (Danio rerio)a japonská medaka(Oryzias latipes),jsou druhy s velmi vysokou plodností a relativně krátkými životními cykly, což umožňuje rychlou analýzu funkce genů a mechanismů onemocnění23, což poskytuje ještě větší výhody při řešení různých biologických a fyziologických otázek vzhledem k četným dobře zavedeným protokolům a genetickým nástrojům dostupným pro tyto druhy25.

V četných studiích bylo odstranění gonád (gonadektomie) spolu s technikami odběru krve použito jako metoda ke zkoumání mnoha fyziologických otázek, včetně jeho účinků na reprodukční fyziologii obratlovců u savců 26, 27, 28, ptáků 29 a obojživelníků 30. Ačkoli účinky gonadektomie na reprodukční fyziologii, jako je tamoxifen, mohou být alternativními antagonisty sexuálních steroidů léky se zdají být nekonzistentní kvůli bimodálním účinkům 31, 32. Chronická expozice antagonistům pohlavních steroidů může vést ke zvětšení vaječníků 33, 34, což může kvůli nezdravému fenotypu znemožnit pozorování jeho účinků v dlouhodobém horizontu. Kromě toho není možné provést rehabilitační experiment po léčbě pohlavními steroidy, aby se odůvodnil specifický účinek určitých pohlavních steroidů. Kromě výše uvedených bodů byly široce přezkoumány další kompromisy používání antagonistů pohlavních steroidů31. Proto se gonadektomie i dnes objevuje jako účinná metoda pro zkoumání role pohlavních steroidů.

Zatímco gonadektomie a techniky odběru krve jsou relativně snadno proveditelné u větších druhů, jako je mořský okoun(Dicentrarchus labrax) 35, Střízlík modrohlavý(Thalassoma bifasciatum) 36, psoun(Scyliorhinus canicula) 37 a som(Heteropneustes fossilis и Clarias bathracus) 38, 39, dělají problémy při použití na malé ryby jako medaka. Například použití Fish Anesthesia Delivery System (FADS) 40 je méně proveditelné a zdá se, že je náchylné k nadměrnému fyzickému poškození malých ryb. Kromě toho postup gonadektomie, který se obvykle používá pro větší ryby 40, není vhodný pro malé ryby, které vyžadují vysokou přesnost, aby nedošlo k nadměrnému poškození. A konečně, odběr krve je náročný kvůli omezenému přístupu k krevním cévám a malému množství krve u těchto zvířat. Proto je důležitý jasný protokol demonstrující každý krok gonadektomie a odběru krve v malém teleostu.

Tento protokol demonstruje postupné postupy pro gonadektomii s následným odběrem krve z japonské medaky, malé sladkovodní ryby pocházející z východní Asie. Japonská medaka má sekvenovaný genom, několik dostupných molekulárních a genetických nástrojů 25 a genetický systém určování pohlaví, který umožňuje studium pohlavních rozdílů před tím, než jsou dobře vyvinuty sekundární pohlavní znaky nebo gonády 41. Zajímavé je, že japonská medaka má srostlou gonádu, na rozdíl od mnoha jiných druhů teleost 42. Tyto dvě metody dohromady zaberou pouhých 8 minut a doplní seznam video tagů, které jsou již k dispozici pro označení krevních cév43 neurony 44 a primární buněčná kultura 45. Tyto metody umožní výzkumné komunitě prozkoumat a lépe pochopit roli pohlavních steroidů v mechanismech zpětné vazby, stejně jako plasticitu mozku a hypofýzy v budoucnu.

protokol

Všechny experimenty a manipulace se zvířaty byly prováděny v souladu s pokyny pro dobré životní podmínky pokusných zvířat na Norské univerzitě přírodních věd. Experimenty využívající gonadektomii byly schváleny norským úřadem pro bezpečnost potravin (FOTS ID 24305). POZNÁMKA: Pokusy byly provedeny s použitím dospělého samce a samice (ve věku 6-7 měsíců, hmotnost asi 0,35 g, délka asi 2,7 cm) japonské medaky. Pohlaví bylo určeno rozlišováním sekundárních sexuálních charakteristik, jako je velikost a tvar hřbetní a anální ploutve, jak je popsáno v 42,47. 1. Příprava přístrojů a roztoků Připravte anestetický roztok (0,6% trikain). Zřeďte 0,6 g trikainu (MS-222) ve 100 ml 10x fosfátem pufrovaného fyziologického roztoku (PBS). Rozdělte 1 ml roztoku trikainu do několika 1,5 ml plastových zkumavek a skladujte při -20 °C až do použití. Připravte regenerační vodu (0,9% roztok NaCl) přidáním 18 g NaCl do 2 l akvarijní vody. Roztok skladujte při pokojové teplotě až do použití. Připravte si řezné nástroje šikmým sekáním břitvy, abyste vytvořili ostrý hrot (obrázek 1A). Roztok antikoagulantu v krvi (0,05 U/ul heparinu sodného) se připraví zředěním 25 ul heparinu sodného v 500 ul 1x PBS. Antikoagulační roztok skladujte při teplotě 4 °C až do použití. Připravte dvě skleněné jehly ze skleněné kapiláry o délce 90 mm vytažením skleněné kapiláry pomocí vytahováku jehel (obrázek 1B) podle pokynů výrobce POZNÁMKA: Vnější průměr skleněné jehly je 1 mm a vnitřní průměr je 0,6 mm. Připravte si 1,5ml plastový uzávěr zkumavky tak, že uzávěr odříznete a vytvoříte otvor, který odpovídá vnějšímu průměru jehly (obrázek 1C). Pro vytvoření otvoru zahřejte jeden konec skleněné kapiláry o tloušťce 9 mm a protřete nahřátou skleněnou kapiláru víkem. Případně použijte jehlu k propíchnutí uzávěru, dokud průměr otvoru nebude v jedné rovině s 9mm skleněnou kapilárou. 2. Postup gonadektomie Připravte 0,02% anestetický roztok zředěním jedné zkumavky zásobního trikainu (0,6%) ve 30 ml akvarijní vody. Připravte si pitevní nástroje, včetně jedné ultrajemné a dvou jemných kleští (jedna s relativně širokým hrotem), malých nůžek, nylonové nitě a břitvy, jak je popsáno v kroku 1.3. Anesteziujte rybu umístěním do 0,02% anestetického roztoku na 30-60 sekund POZNÁMKA: Délka anestezie závisí na velikosti a hmotnosti ryby a měla by být přizpůsobena. Aby bylo zajištěno úplné umrtvení ryby, lze tělo ryby jemně sevřít kleštěmi. Pokud ryba nereaguje, může začít gonadektomie. Vyjměte rybu z anestetického roztoku a položte ji vodorovně na bok, mimo vodu, pod pitevní mikroskop. Ovariektomie (OVX) u samic Odstraňte vejcorodá vajíčka (vejce visící mimo tělo samice), pokud existují, a seškrábněte šupiny v oblasti řezu (obrázek 2A). Opatrně proveďte řez o délce asi 2-2,5 mm mezi žebry, mezi pánevní a anální ploutví (obrázek 2A), pomocí žiletky. Potom opatrně zaštípněte břicho ryby a postupně odstraňte úvazy pomocí tenké pinzety se širokým koncem. Vyřízněte konec vaječníků pomocí jemných kleští a odložte vaječníky stranou (obrázek 2B). Pokud je ovariální vak porušen, odstraňte co nejúplněji veškeré stopy gonád a nezůstávejte žádná neovulovaná vajíčka. Orchiektomie u mužů Opatrně proveďte řez mezi žebry nad řitním otvorem (obrázek 2A) a pomalu řez otevřete pomocí jemných kleští. Jemnými kleštěmi opatrně uchopte varlata a pomalu varlata vyjměte. Poté odřízněte konec varlat, abyste je úplně odstranili (obrázek 2B). U mužské orchidektomie jsou všechny preparáty podobné jako u žen, až po část řezu. Při zachycení varlat se někdy získá tuk, který se varlatům podobá. Po obnovení tuku je však možné provést další pokus o lokalizaci varlat (obrázek 2B). POZNÁMKA: U mužů i žen je důležité minimalizovat velikost břišního řezu, aby se zabránilo nadměrnému poranění, které může vést k úmrtí. Někdy mohou také střeva vyjít řezem spolu s gonádami, takže se před uzavřením ujistěte, že jsou správně vráceny dovnitř řezu. Důležitá je předchozí znalost umístění vaječníků a varlat v břiše medaky. Řez se sešije stejným způsobem pro muže i ženy (obrázek 3). Umístěte nylonovou nit blízko oblasti incize a propíchněte kůži na pravé straně incize skrz vnitřní tělesnou dutinu pomocí ultrajemných kleští, abyste nit uchopili jemnými kleštěmi (obrázek 3;1-2). Propíchněte kůži na levé straně řezu vnější dutinou těla, abyste vytáhli závit (obr. 3; 3-4). Uzavřete dělicí otvor a udělejte dva uzly a odstřihněte přebytečnou nit (obrázek 3;4-6). Celá procedura od anestezie po šití obvykle trvá do 6 minut. Delší období může způsobit smrt. Umístěte ryby do regenerační vody a nechte alespoň 24 hodin před přemístěním do akvarijního systému. POZNÁMKA: Gonadektomované ryby obvykle vykazují normální chování po 1-2 hodinách v regenerační vodě. Proto lze v závislosti na účelu pokusu odebrat vzorek ryb po tomto časovém intervalu. 3. Postup odběru krve Připravte si pomůcky: skleněnou jehlu, silikonovou kapiláru, plastovou zkumavku s otvorem, prázdnou plastovou zkumavku o objemu 1,5 ml, minicentrifugu a pásku. Anestetizujte rybu 0,02% anestetickým roztokem, jak je popsáno v kroku 2.1 a umístěte rybu pod pitevní mikroskop ve svislé poloze (obrázek 4A). Umístěte rybu na světlý povrch, abyste lépe viděli ocasní žílu. Připravte nádobku na krev připojením skleněné jehly ke silikonové kapilárě (obrázek 4B). Špičku jehly zlomte širokými kleštěmi a potřete vnitřek jehly antikoagulačním roztokem odsátím a foukáním POZNÁMKA: Jako bezpečnostní opatření se doporučuje použití přísavky a silikonové kapiláry dlouhé alespoň 50 cm, aby se zabránilo jakémukoli přímému kontaktu s krví při odsávání. Také se ujistěte, že otvor v hrotu jehly je dostatečně velký, aby umožnil odtok krve. Nasměrujte jehlu do oblasti růstu ryby, zamiřte na žílu kaudální cysty (obrázek 5A) a odeberte krev ústy, dokud nebude naplněna alespoň jedna čtvrtina celkového objemu jehly (obrázek 5B) POZNÁMKA: Před vyjmutím jehly z těla ryby je důležité zastavit sání. Uvolněte jehlu a přiložte kousek pásky blízko k ostrému konci jehly. Nasaďte uzávěr s otvorem na odběrovou zkumavku a zasuňte jehlu dovnitř zkumavky otvorem s hrotem jehly vně (obrázek 5C). Umístěte ryby do regenerační vody a nechte je alespoň 24 hodin před přemístěním do systému akvária. POZNÁMKA: Chcete-li provést druhý odběr krve u stejné ryby, odečtěte krev jeden týden po prvním odběru krve. Blesk otáčí odebranou krev po dobu 1-2 sekund při 1000 x g při pokojové teplotě, aby se krev shromáždila do zkumavky.

Reprezentativní výsledky

Tento protokol popisuje každý krok provedení gonadektomie a odběru krve v malém modelu teleost, japonská medaka. Přežití samic ryb po ovariektomii (OVX) bylo 100 % (10 z 10 ryb), zatímco 94 % (17 z 18 ryb) samců přežilo orchidektomii. Mezi?…

Japonský rýžovník (Oryzias latipes), také známý jako medaka, je členem rodu Oryzias (rýžovník), jediného rodu v podčeledi Oryziinae. Tento malý (až asi 3,6 cm nebo 1,4 palce) původem z východní Asie žije v rýžových polích, bažinách, rybnících, pomalu tekoucích potocích a tůních. Je euryhalin a vyskytuje se v brakické i sladké vodě. Jako akvarijní ryba se stala oblíbenou díky své odolnosti a atraktivnímu zbarvení: její zbarvení sahá od krémově bílé přes nažloutlou ve volné přírodě až po bílou, krémově žlutou nebo oranžovou u akváriových exemplářů. Byly také vytvořeny jasně žluté, červené nebo zelené transgenní populace podobné GloFish, ale jejich prodej v EU je zakázán. Medaka je v Japonsku oblíbeným domácím mazlíčkem již od 17. století. Po oplodnění nosí samice vajíčka přichycená k přední části řitní ploutve nějakou dobu, než je uloží na rostliny nebo podobné předměty.

• 1 Ekologie
• 2 Taxonomie a rozsah
  • 2.1 Původ jižní a severní populace Japonska
  • 3.1 Ve vesmíru
  • 3.2 Inbreedingové linie
  • 3.3 Porozumění sexu a reprodukci
  • 3.4 Imunologie
  • 4.1 Stav
  • 4.2 Problémy

  Ekologie

  Medaka žije v malých rybnících, mělkých řekách a rýžových polích. Mohou přežít v širokém rozmezí teplot vody (3–42 °C nebo 37–108 °F), ale preferují teploty vody 15–28 °C (59–82 °F). Protože se živí mladými komáry a malým planktonem, je známo, že jsou prospěšné pro člověka. Produkují 10-20 vajíček za porod a v laboratorních podmínkách mohou produkovat vajíčka každý den. Jsou sezónní chovatelé a obvykle kladou vejce mezi jarem a létem. Raději kladou vajíčka kolem vodní trávy a často se rozhodnou žít na rýžových polích. Obvykle trvá 4-10 dní, než se vajíčko vylíhne. Mají pokročilou funkci ledvin, která jim umožňuje žít ve slané a brakické vodě. Průměrná délka života tohoto druhu ve volné přírodě se odhaduje na 2 roky, i když v laboratorních podmínkách mohou přežít 3–5 let. Žijí ve školách a dokážou rozeznat tváře ostatních Medáků.

  Taxonomie a rozsah

  

  Skupina v mělkém příkopu, typické stanoviště tohoto druhu (Katori, Japonsko)

  Jak bylo původně definováno, O. latipes byl původem z velké části východní a pevninské jihovýchodní Asie, ale v posledních desetiletích byla většina těchto populací rozdělena do samostatných druhů. na základě morfologických (morfometrických a meristických) a genetických dat. To omezuje původní výskyt některých O. latipes na Japonsko: východní a jižní Honšú, Šikoku, Kjúšú a menší jižní ostrovy země. Dříve zahrnutá do tohoto druhu, ale nyní považována za odlišnou, se O. sinensis vyskytuje na severozápadě Honšú v Japonsku (místně hybridizuje s O. latipes) a O. sinensis (čínská rýžová ryba) ve většině Číny, západní Koreje a části pevninské jihovýchodní Asie. Taxonomická pozice některých populací, včetně některých v Číně, Laosu a východní Koreji, je nejasná a vyžaduje další studium. Je možné, že všechny tyto čínské populace jsou součástí O. sinensis, ale laoské exempláře jsou poměrně velké, připomínají spíše O. latipes než drobný O. sinensis. Východokorejská populace je zahrnuta do kladu s O. sakaizumii a O. latipes. Morfologicky je blíže k O. sakaizumii než k O. latipes, ale může jít o nepopsaný druh.

  O. latipes byl zavlečen na Hokkaido v severním Japonsku (kde rýžové ryby nejsou původní). Existují další zprávy o zavlečení po celém světě, ale alespoň většina z nich v kontinentální Asii a Evropě se týká O. sinensis (čínská rýžová ryba).

  Původ jižní a severní populace Japonska

  Fylogenetická analýza ukazuje, že jižní japonská populace pocházela ze severní populace Kjúšú a rozšířila se na Honšú. Na druhé straně severní populace pocházela z populace regionu Tajima-Tango a rozšířila se podél pobřeží Japonského moře. O. latipes je známo, že se skládá z devíti subpopulací: východojaponského typu, východního typu Setouchi, typu západního Setouchi, typu San’in, typu severního Kyushu, typu Osumi, typu Ariake, typu Satsuma a typu Ryukyu. Tyto subpopulace byly navzájem smíchány kvůli umělému uvolnění a snížení místní genetické diverzity.

  Použití ve vědě

  

  Oranžová varianta akvária (himedaka), získaná selektivním šlechtěním, je vyfotografována shora. Nesmí být zaměňována s pestrobarevnými variantami transgenních akvárií.

  Oryzias latipes je modelový organismus, který je široce používán v mnoha oblastech biologického výzkumu, především v toxikologii. Medaky mají krátkou dobu březosti a reprodukční kapacitu, což jsou vlastnosti, které je usnadňují vychovat v laboratoři. Jsou mrazuvzdorné a snadno se přepravují. Výzkumníci analyzovali téměř všechny aspekty životního cyklu medaky, včetně sexuálního chování, genetické dědičnosti zbarvení, zvyků tření, krmení, patologie, embryologického vývoje, ekologie atd. Má relativně malý genom (~800 megabázových párů, poloviční velikost genomu jiné oblíbené modelové ryby, zebřičky), stejně jako generační dobu 7 až 9 týdnů pro růst široký rozsah 6 °C (namísto toho více 40 °C). nebo 43–104 °F).

  Transgenní. Medaka se vyrábí poměrně snadno. Byly geneticky modifikovány tak, aby vylučovaly různé lidské hormony, exprimovaly promotorové sekvence z jiných ryb a produkovaly antimikrobiální proteiny a protein, který způsobuje, že medaka září fluorescenčně zeleně, žlutě nebo červeně. Existuje také mnoho mutací, které se u medaka nacházejí náhodně, jako je mutovaný kmen bez šupin a jeden s velmi dlouhými ploutvemi. Byly vytvořeny haploidní linie embryonálních kmenových buněk.

  Ve vesmíru

  

  Přehrát média O. latipes páření v prostoru

  O. latipes se vyznačuje tím, že je prvním obratlovcem, který se pářil na oběžné dráze. Výsledkem páření byl vrh zdravého potěru, který se vylíhl na raketoplánu Columbia v roce 1994. O. Latipes se vrátil do vesmíru v roce 2012, odstartoval na palubě kosmické lodi Sojuz TMA-06M a umístil do akvária na palubě Mezinárodní vesmírné stanice.

  Příbuzenská plemenitba

  Možnost sériového inbreedingu usnadňuje genetický výzkum snížením počtu heterozygotních oblastí v genomu. V medaka je poměrně snadné vytvořit inbrední linie, na rozdíl od jiných modelových druhů, jako jsou zebrafish a myši. Do roku 1979 výzkumníci vytvořili 10 inbredních kmenů. Tyto inbrední linie udělaly z medaka modelový druh pro vědecký výzkum v oblasti genetiky. V roce 2014 se začalo pracovat na vytvoření 111 různých inbredních linií odvozených z jediné populace shromážděné ve volné přírodě.

  Pochopení sexu a reprodukce

  Medaka se rozmnožují denně, což je optimální vlastnost pro studium jejich reprodukční biologie. Vědci intenzivně studovali aktivitu osy HPG u tohoto druhu. Medaka jsou navíc prvním nesavčím druhem obratlovců, u kterého byl identifikován gen určující pohlaví (DMY), jejich pohlaví lze změnit manipulací s pohlavními steroidy a vykazují morfologický sexuální dimorfismus mezi samci a samicemi. Kromě toho byly pro studium reprodukčního mechanismu medaky vyvinuty některé metody, jako je ovariektomie a změněné cykly světlo-tma.

  Imunologie

  Objev, že T buňky jsou domovem brzlíku v medaka, vedl k poznání, že to není specifické pro savce, ale lze je nalézt u jiných obratlovců.

  konzervace

  Postavení

  Medaka je na Červeném seznamu IUCN uvedena jako nejméně znepokojená. Důvodem pro tuto klasifikaci je, že tento druh obývá rozšířené stanoviště (755 000 km) a je relativně hojný v různých stanovištích. Japonské ministerstvo životního prostředí ho však považuje za ohrožený druh. Mnoho místních komunit se snaží zachovat divokou medaku v Japonsku.

  Problémy

  S ochranou medaky jsou spojeny dva hlavní problémy: degradace stanovišť a hybridizace s domestikovanou medakou (himedaka). V důsledku modernizace rýžových polí a zavlažovacích kanálů jsou optimální místa pro rozmnožování medaky výrazně omezena. Nedávné studie navíc potvrdily, že himedaka byla zavlečena do mnoha místních oblastí umělým vypouštěním. Tím se odstraní místní genetické adaptace každé subpopulace medaka. Navíc, protože himedaka má jasně oranžovou barvu těla, hybridy budou přitahovat více predátorů a tím snížit celkovou populaci medaka. V roce 2011 vědci zjistili, že téměř 15 % divoce ulovených medaka v Naře mělo genový marker specifický pro himedaka. K těmto obavám se přidává, že invazivní druhy, jako jsou komáři, soutěží s medakou tím, že sdílejí stejné stanoviště. Studie zjistila, že více než 70 % medaků utrpělo poranění ocasní ploutve v důsledku útoků komárů. Poškození řitní ploutve sníží počet medakových potomků tím, že zabrání námluvám. V roce 2006 bylo zjištěno, že transgenní linie medaka byla do Japonska dovezena z Tchaj-wanu pro komerční účely. Tato transgenní linie byla zavedena s genem, který exprimuje zelenou fluorescenci, což způsobuje, že tělo září. Nyní byla tato transgenní linie vypuštěna do volné přírody a způsobuje genetické znečištění. Neexistuje žádná komplexní studie velikosti populace medaka, ale genomická analýza jedné podskupiny medaka naznačuje, že jejich efektivní velikost populace je kolem 25000 70000-XNUMX XNUMX.

  Společenský význam v Japonsku

  Medaka byla v Japonsku chována jako domácí mazlíčci po staletí. Ryby se v posledních letech staly ještě populárnějšími, přičemž některá vzácnější plemena mají hodnotu přes 1 milion jenů (přibližně 10 000 USD), ačkoli běžnější odrůdy (jako je himedaka) lze zakoupit za přibližně 50 jenů za rybu. V současné době je registrováno 456 komerčních kmenů dostupných pro akvakulturu. Medaka jsou nejen chováni jako domácí mazlíčci, ale jsou také široce používáni ve vzdělávání; Medaka se často pěstuje ve třídách japonských základních škol, aby studentům poskytla bezprostřední zkušenost s péčí o živé organismy a podpořila širší porozumění životním cyklům zvířat.

  Viz také

  

  • Japonský portál
  • Rybí portál
  • Mummichog (Fundulus heteroclitus), první ryba vyslaná do vesmíru v roce 1973
  • Růžovočervená střevle

  reference

  externí odkazy

  Vyhledejte Medaka ve Wikislovníku, bezplatném slovníku.

  Wikimedia Commons obsahuje materiál související s: Oryzias latipes (kategorie )